Lucigenin

N° de catalogueS6824 Lot :S682401

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Données techniques

Formule

C28H22N4O6
Poids moléculaire 510.5 Numéro CAS 2315-97-1
Solubilité (25°C)* In vitro DMSO 20 mg/mL (39.17 mM)
Water Insoluble
Ethanol Insoluble
In vivo (Ajouter les solvants au produit individuellement et dans lordre.)
Homogeneous suspension
CMC-NA
≥5mg/ml Taking the 1 mL working solution as an example, add 5 mg of this product to 1 ml of CMC-Na solution, mix evenly to obtain a homogeneous suspension with a final concentration of 5 mg/ml.
* <1 mg/ml signifie légèrement soluble ou insoluble.
* Veuillez noter que Selleck teste la solubilité de tous les composés en interne, et la solubilité réelle peut différer légèrement des valeurs publiées. Ceci est normal et est dû à de légères variations dun lot à lautre.
* Expédition à température ambiante (les tests de stabilité montrent que ce produit peut être expédié sans aucune mesure de refroidissement.)

Préparation des solutions mères

Activité biologique

Description Lucigenin (NSC-151912, L-6868) est une sonde fluorescente qui présente une fluorescence bleu-vert en présence de radicaux anions superoxydes et de chlorure générés de manière endogène dans les cellules.
Cibles
superoxide anion radical chloride
In vitro

1.1 Préparation de la solution mère
Dissoudre 1 mg de Lucigenin dans 0,1919 mL de DMSO pour obtenir 10 mM de ce composé.
Note : Il est recommandé de stocker la solution mère à -20 0C -80 0C à l'abri de la lumière et d'éviter les cycles répétés de congélation-décongélation.
1.2 Préparation de la solution de travail de ce composé
Diluer la solution mère dans un milieu de culture cellulaire sans sérum ou du PBS pour obtenir 5-10 5M de cette solution de travail chimique.
Note : Veuillez ajuster la concentration de cette solution de travail chimique en fonction de la situation réelle.
Coloration cellulaire
2.1 Préparation des cellules.
Pour les cellules en suspension : Centrifuger à 1000 g à 40C pendant 3-5 minutes, puis jeter le surnageant. Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois.
Pour les cellules adhérentes : Jeter le milieu de culture cellulaire et ajouter de la trypsine pour dissocier les cellules afin d'obtenir une suspension unicellulaire. Centrifuger à 1000 g à 40C pendant 3-5 minutes, puis jeter le surnageant. Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois.
2.2 Ajouter 1 mL de la solution de travail de ce composé, puis incuber à température ambiante pendant 15 minutes.
2.3 Centrifuger à 400 g à 40C pendant 3-4 minutes, puis jeter le surnageant.
2.4 Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois.
2.5 Remettre les cellules en suspension avec un milieu de culture cellulaire sans sérum ou du PBS, puis détecter par microscope à fluorescence.

Protocole (de référence)

Références

  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9442038/

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EXPÉDITION ET STOCKAGE
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