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Hoechst 33342 Chimique de Dyes

Réf. Catalogue: S0485

Le Hoechst 33342 (Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342) est un colorant fluorescent perméable aux membranes qui peut colorer les cellules vivantes. Ce composé se lie aux régions riches en adénine-thymine de l'ADN dans le sillon mineur et augmente considérablement la fluorescence. Il permet de visualiser facilement le noyau des cellules en interphase et les chromosomes des cellules en mitose.
Hoechst 33342 Dyes Chimique Chemical Structure

Structure chimique

Poids moléculaire: 452.55

Aller à

Contrôle Qualité (Quality Control)

Lot : Pureté : 99.94%
99.94

Informations chimiques, stockage et stabilité (Chemical Information, Storage & Stability)

Poids moléculaire 452.55 Formule

C27H28N6O

 Stockage (À compter de la date de réception) 3 years -20°C powder
N° CAS 23491-52-3 -- Stockage des solutions mères

Synonymes Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Solubilité (Solubility)

In vitro
Lot:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(Le DMSO contaminé par l'humidité peut réduire la solubilité. Utiliser du DMSO frais et anhydre.)

Ethanol : Insoluble

Calculateur de molarité

Masse Concentration Volume Poids moléculaire
Calculateur de dilution Calculateur de poids moléculaire

In vivo
Lot:

Calculateur de formulation in vivo (Solution claire)

Étape 1 : Saisir les informations ci-dessous (Recommandé : Un animal supplémentaire pour tenir compte des pertes pendant l'expérience)

mg/kg g μL

Étape 2 : Saisir la formulation in vivo (Ceci est seulement le calculateur, pas la formulation. Veuillez nous contacter d'abord s'il n'y a pas de formulation in vivo dans la section Solubilité.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Résultats du calcul :

Concentration de travail : mg/ml;

Méthode de préparation du liquide maître DMSO : mg médicament prédissous dans μL DMSO ( Concentration du liquide maître mg/mL, Veuillez nous contacter d'abord si la concentration dépasse la solubilité du DMSO du lot de médicament. )

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, puis ajouterμL PEG300, mélanger et clarifier, puis ajouterμL Tween 80, mélanger et clarifier, puis ajouter μL ddH2O, mélanger et clarifier.

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, puis ajouter μL Huile de maïs, mélanger et clarifier.

Note : 1. Veuillez vous assurer que le liquide est clair avant d'ajouter le solvant suivant.
2. Assurez-vous d'ajouter le(s) solvant(s) dans l'ordre. Vous devez vous assurer que la solution obtenue, lors de l'ajout précédent, est une solution claire avant de procéder à l'ajout du solvant suivant. Des méthodes physiques telles que le vortex, les ultrasons ou le bain-marie chaud peuvent être utilisées pour faciliter la dissolution.

Mécanisme d'action (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Préparation de la solution mère
Dissoudre 10 mg de Hoechst 33342 dans 5 ml de DMSO
. 1.2 Préparation de la solution de travail Diluer la solution mère dans un milieu de culture cellulaire sans sérum ou dans du PBS pour obtenir une solution de travail à 10 µg/mL. Conserver la solution mère à 4 °C ou -20 °C à l'abri de la lumière et éviter les cycles répétés de congélation-décongélation.
1.2 Préparation de la solution de travail de
ce composé Diluer la solution mère dans un milieu de culture cellulaire sans sérum ou du PBS pour obtenir une concentration finale de 10 μg/mL de cette solution de travail chimique.
Remarque : veuillez ajuster la concentration de cette solution de travail en fonction de la situation réelle.
1. Coloration des cellules
2.1 Cellules en suspension (plaque à 6 puits)
a. Centrifuger à 1000 g à 4 °C pendant 3 à 5 minutes, puis jeter le surnageant. Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois. La densité cellulaire est de 1×106/mL.
b. Ajouter 1 mL de solution de travail, puis incuber à température ambiante pendant 3 à 10 minutes.
c. Centrifuger à 400 g à 4 °C pendant 3 à 4 minutes, puis jeter le surnageant.
d. Laver deux fois avec du PBS, 5 minutes à chaque fois.
e. Remettre les cellules en suspension avec un milieu de culture cellulaire sans sérum ou du PBS. Observation par microscopie à fluorescence ou cytométrie en flux.
2.2 Cellules adhérentes
a. Cultiver les cellules adhérentes sur des lamelles stériles.
b. Retirer la lamelle du milieu et aspirer l'excès de milieu.
c. Ajouter 100 μL de solution de travail, agiter doucement pour recouvrir complètement les cellules, puis incuber à température ambiante pendant 3 à 10 minutes.
d. Laver deux fois avec le milieu, 5 minutes à chaque fois. Observation par microscopie à fluorescence ou cytométrie en flux.
Références