pour la recherche uniquement

Hoechst 33342 Dyes Chimique

Réf. Catalogue: S0485

Le Hoechst 33342 (Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342) est un colorant fluorescent perméable aux membranes qui peut colorer les cellules vivantes. Ce composé se lie aux régions riches en adénine-thymine de l'ADN dans le sillon mineur et augmente considérablement la fluorescence. Il permet de visualiser facilement le noyau des cellules en interphase et les chromosomes des cellules en mitose.
Hoechst 33342 Dyes Chimique Chemical Structure

Structure chimique

Poids moléculaire: 452.55

Aller à

Contrôle Qualité (Quality Control)

Lot : Pureté : 99.94%
99.94

Informations chimiques, stockage et stabilité (Chemical Information, Storage & Stability)

Poids moléculaire 452.55 Formule

C27H28N6O

Stockage (À compter de la date de réception) 3 years -20°C powder
N° CAS 23491-52-3 -- Stockage des solutions mères

Synonymes Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Solubilité (Solubility)

In vitro
Lot:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(Le DMSO contaminé par l'humidité peut réduire la solubilité. Utiliser du DMSO frais et anhydre.)

Ethanol : Insoluble

Calculateur de molarité

Masse Concentration Volume Poids moléculaire
Calculateur de dilution Calculateur de poids moléculaire

In vivo
Lot:

Calculateur de formulation in vivo (Solution claire)

Étape 1 : Saisir les informations ci-dessous (Recommandé : Un animal supplémentaire pour tenir compte des pertes pendant l'expérience)

mg/kg g μL

Étape 2 : Saisir la formulation in vivo (Ceci est seulement le calculateur, pas la formulation. Veuillez nous contacter d'abord s'il n'y a pas de formulation in vivo dans la section Solubilité.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Résultats du calcul :

Concentration de travail : mg/ml;

Méthode de préparation du liquide maître DMSO : mg médicament prédissous dans μL DMSO ( Concentration du liquide maître mg/mL, Veuillez nous contacter d'abord si la concentration dépasse la solubilité du DMSO du lot de médicament. )

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, puis ajouterμL PEG300, mélanger et clarifier, puis ajouterμL Tween 80, mélanger et clarifier, puis ajouter μL ddH2O, mélanger et clarifier.

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, puis ajouter μL Huile de maïs, mélanger et clarifier.

Note : 1. Veuillez vous assurer que le liquide est clair avant d'ajouter le solvant suivant.
2. Assurez-vous d'ajouter le(s) solvant(s) dans l'ordre. Vous devez vous assurer que la solution obtenue, lors de l'ajout précédent, est une solution claire avant de procéder à l'ajout du solvant suivant. Des méthodes physiques telles que le vortex, les ultrasons ou le bain-marie chaud peuvent être utilisées pour faciliter la dissolution.

Mécanisme d'action (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Preparation of the stock solution
Dissolve 10 mg of Hoechst 33342 in 5 mL DMSO
Note: It is recommended to store the stock solution at 4℃ or -20℃ away from light and avoid repetitive freeze-thaw cycles.
1.2 Preparation of this compound working solution
Dilute the stock solution in serum-free cell culture medium or PBS to obtain final concentration 10 μg/mL this chemical working solution.
Note: Please adjust the concentration of this reagent working solution according to the actual situation.
1.Cell staining
2.1 Suspension cells(6-well plate)
a. Centrifuge at 1000 g at 4℃ for 3-5 minutes and then discard the supernatant. Wash twice with PBS, 5 minutes each time. The cell density is 1×106/mL.
b. Add 1 mL of working solution, and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
c. Centrifuge at 400 g at 4℃ for 3-4 minutes and then discard the supernatant.
d. Wash twice with PBS, 5 minutes each time.
e. Resuspend cells with serum-free cell culture medium or PBS. Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.
2.2 Adherent cells
a. Culture adherent cells on sterile coverslips.
b. Remove the coverslip from the medium and aspirate excess medium.
c. Add 100 μL of working solution, gently shake it to completely cover the cells,and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
d. Wash twice with medium, 5 minutes each time.Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.

Références