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WZ4003 AMPK inhibiteur

Réf. CatalogueS7317

Le WZ4003 est un inhibiteur très spécifique de la kinase NUAK avec une CI50 de 20 nM et 100 nM pour NUAK1 et NUAK2 dans les essais cellulaires, respectivement, sans inhibition significative sur 139 autres kinases.
WZ4003 AMPK inhibiteur Chemical Structure

Structure chimique

Poids moléculaire: 496.99

Aller à

Contrôle Qualité

Lot : S731701 DMSO]10 mg/mL]false]Water]Insoluble]false]Ethanol]Insoluble]false Pureté : 99.72%
99.72

Informations chimiques, stockage et stabilité

Poids moléculaire 496.99 Formule

C25H29ClN6O3

Stockage (À compter de la date de réception)
N° CAS 1214265-58-3 Télécharger le SDF Stockage des solutions mères

Synonymes N/A Smiles CCC(=O)NC1=CC(=CC=C1)OC2=NC(=NC=C2Cl)NC3=C(C=C(C=C3)N4CCN(CC4)C)OC

Solubilité

In vitro
Lot:

DMSO : 10 mg/mL (20.12 mM)
(Le DMSO contaminé par lhumidité peut réduire la solubilité. Utiliser du DMSO frais et anhydre.)

Water : Insoluble

Ethanol : Insoluble

Calculateur de molarité

Masse Concentration Volume Poids moléculaire
Calculateur de dilution Calculateur de poids moléculaire

In vivo
Lot:

Calculateur de formulation in vivo (Solution claire)

Étape 1 : Saisir les informations ci-dessous (Recommandé : Un animal supplémentaire pour tenir compte des pertes pendant lexpérience)

mg/kg g μL

Étape 2 : Saisir la formulation in vivo (Ceci est seulement le calculateur, pas la formulation. Veuillez nous contacter dabord sil ny a pas de formulation in vivo dans la section Solubilité.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Résultats du calcul :

Concentration de travail : mg/ml;

Méthode de préparation du liquide maître DMSO : mg médicament prédissous dans μL DMSO ( Concentration du liquide maître mg/mL, Veuillez nous contacter dabord si la concentration dépasse la solubilité du DMSO du lot de médicament. )

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, puis ajouterμL PEG300, mélanger et clarifier, puis ajouterμL Tween 80, mélanger et clarifier, puis ajouter μL ddH2O, mélanger et clarifier.

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, puis ajouter μL Huile de maïs, mélanger et clarifier.

Note : 1. Veuillez vous assurer que le liquide est clair avant dajouter le solvant suivant.
2. Assurez-vous dajouter le(s) solvant(s) dans lordre. Vous devez vous assurer que la solution obtenue, lors de lajout précédent, est une solution claire avant de procéder à lajout du solvant suivant. Des méthodes physiques telles que le vortex, les ultrasons ou le bain-marie chaud peuvent être utilisées pour faciliter la dissolution.

Mécanisme daction

Targets/IC50/Ki
NUAK1
(Cell-free assay)
20 nM
NUAK2
(Cell-free assay)
100 nM
In vitro
Dans les cellules HEK-293 exprimant le NUAK1 de type sauvage, le WZ4003 (3–10 μM) supprime de manière marquée la phosphorylation de MYPT1 médiée par NUAK1. De plus, ce composé (10 μM) inhibe la phosphorylation de MYPT1 Ser445 ainsi que la migration, l'invasion et la prolifération cellulaires à un degré similaire à celui de l'invalidation de NUAK1 dans les MEF ou de son extinction dans les cellules U2OS. Il présente également une affinité élevée et spécifique pour l'EGFR mutant L858R/T790M, tandis qu'une CI50 cellulaire significativement réduite est observée contre les cellules Ba/F3 contenant T790M.
Essai kinase
Détermination de la CI50
Les enzymes actives GST–NUAK1, GST–NUAK1[A195T] et GST–NUAK2 sont purifiées à l'aide de glutathion–Sepharose à partir de lysats de cellules HEK-293 36 à 48 h après la transfection transitoire de constructions mammaliennes pEBG2T exprimant NUAK1, NUAK1[A195T] ou NUAK2 marqués par GST en N-terminal. Pour les essais de kinase peptidique, des plaques à 96 puits sont utilisées, et chaque réaction est réalisée en triple. Chaque réaction est préparée dans un volume total de 50 μL contenant 100 ng de NUAK1 (type sauvage ou mutant A195T) ou NUAK2 dans 50 mM Tris/HCl (pH 7,5), 0,1 mM EGTA, 10 mM acétate de magnésium, 200 μM Sakamototide, 0,1 mM [γ -32P]ATP (450–500 c.p.m./pmol) et les concentrations indiquées d'inhibiteurs dissous dans le DMSO. Après incubation pendant 30 min à 30°C, les réactions sont arrêtées par l'ajout de 25 mM (final) d'EDTA pour chélater le magnésium. Ensuite, 40 μL du mélange réactionnel sont déposés sur du papier P81 et immergés dans de l'acide orthophosphorique à 50 mM. Les échantillons sont lavés trois fois dans de l'acide orthophosphorique à 50 mM, suivis d'un seul rinçage à l'acétone et d'un séchage à l'air. L'incorporation de [γ -32P]ATP dans le Sakamototide est quantifiée par comptage Cerenkov. Les valeurs sont exprimées en pourcentage du contrôle DMSO. Les courbes de CI50 sont développées et les valeurs de CI50 sont calculées à l'aide du logiciel GraphPad Prism.
Références

Applications

Méthodes Biomarqueurs Images PMID
Western blot Tau-5 / p-tau (Ser356)
S7317-WB1
27720485
Immunofluorescence YAP/TAZ
S7317-IF1
30158528

Support technique

Instructions de manipulation

Tel: +1-832-582-8158 Ext:3

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